試劑盒組成 | 包裝(500微孔) | 保存 |
BCA試劑 | 100ml | 2-8℃ |
Cu試劑 | 3ml | 2-8℃ |
PBS稀釋液 | 30ml | 2-8℃ |
BSA蛋白標準 (5mg/ml BSA) | 1ml | -20℃ |
本試劑盒自訂購之日起一年內有效。本試劑盒用于酶標板或者200ul比色皿時可做500孔。當使用2ml比色皿時可做50孔,如果是1ml比色皿時可做100孔。
產品簡介
堿性條件下,蛋白將Cu2+還原為Cu+, Cu+與BCA試劑形成紫顏色的絡合物,測定其在562nm處的吸收值,并與標準曲線對比,即可計算待測蛋白的濃度。常用濃度的去垢劑SDS,Triton X-100,Tween不影響檢測結果,但受螯合劑(EDTA,EGTA)、還原劑(DTT,巰基乙醇)和脂類的影響。實驗中,若發現樣品稀釋液或裂解液本身背景值較高,可試用Bradford蛋白濃度測定試劑盒。
使用說明
一,微孔酶標儀法
1. 配制工作液: 根據標準品和樣品數量,按50體積BCA試劑加1體積Cu試劑(50:1)配制成BCA工作液,充分混勻(混合時可能會有渾濁,但混勻后就會消失)。BCA工作液室溫24小時內穩定。
2. 稀釋標準品:取10微升BSA標準品用PBS稀釋至100微升(樣品一般可用PBS稀釋),使終濃度為0.5mg/ml。將標準品按0, 2, 4,6,8, 12, 16, 20微升加到96孔板的蛋白標準品孔中,加PBS補足到20微升。
3. 將樣品作適當稀釋(多做幾個梯度,如作2倍、4倍、8倍稀釋),加20微升到96孔板的樣品孔中。由于移液器在取小量時的誤差,標準線前面的點可能不很準確,所以盡可能的讓樣品點落在標準線1/2后。
4. 各孔加入200微升BCA工作液,37℃放置15-30分鐘。用酶標儀測定A562nm,根據標準曲線計算出蛋白濃度。使用溫箱孵育時,應注意防止因水分蒸發影響檢測結果。
二,分光光度計法
如沒有酶標儀,可用分光光度計在離心管中混勻后加入比色皿中比色。
步驟如下:
1.配制工作液: 根據標準品和樣品數量,按50體積BCA試劑加1體積Cu試劑(50:1)配制成BCA工作液,充分混勻(混合時可能會有渾濁,但混勻后就會消失)。BCA工作液室溫24小時內穩定。
2, 稀釋標準品:取100微升BSA標準品用PBS稀釋至1ml(樣品一般可用PBS稀釋),使終濃度為0.5mg/ml。
3, 取八支(或者更多)5ml離心管,標讓號,按下表加入試劑。
離心管號 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7(樣品管1) | 8(樣品管2) | 9(樣品管3) |
標準蛋白BSA | 0 | 40ul | 80ul | 120ul | 160ul | 200ul | 200ul適當稀釋的樣品1 | 樣品2 | …… |
PBS | 200ul | 160ul | 120ul | 80ul | 40ul | 0 | 0 | 0 | 0 |
BCA工作液 | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml | 2ml |
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4, 37℃放置15-30分鐘。用分光光度計測562nm處吸光值,根據標準曲線計算出蛋白濃度。